Solução Omics para Desenvolvimento de Fármacos ASO e siRNA

A CD Genomics oferece uma solução omics para o desenvolvimento de fármacos ASO e siRNA. para equipas de investigação que necessitam de mais do que uma única leitura de knockdown. Ajudamo-lo a conectar a modulação do alvo com a resposta transcriptómica, alterações a nível de vias, sinais fora do alvo e padrões moleculares relacionados com a segurança através de sequenciação, controlo de qualidade e bioinformática personalizada.

  • Validar a redução além de leituras de um único gene
  • Perfil de alterações fora do alvo em todo o transcriptoma
  • Explorar respostas das vias imunes e inflamatórias
  • Compare candidatos em relação às doses e pontos temporais.
  • Receba ficheiros reutilizáveis e relatórios prontos para análise.
Diretrizes para Submissão de Amostras

ASO and siRNA drug development omics solution workflow overview

Entregáveis

  • Dados de sequenciação bruta e ficheiros de leituras limpas
  • Resumo de QC de sequenciação e visão geral do mapeamento
  • Matriz de expressão génica e tabelas de expressão diferencial
  • Gráficos de vulcão, mapas de calor e figuras de PCA
  • Resultados de enriquecimento de vias e revisão focada em alvos fora do alvo
  • Métodos, notas de parâmetros e relatório de análise

A bioinformática personalizada e a comparação de múltiplas condições podem ser planeadas com base no seu desenho de estudo.

Índice

    ASO and siRNA omics evidence map for knockdown response and off-target review

    Conecte a resposta ao tratamento com ASO e siRNA com evidências transcriptómicas, a nível de vias e off-target.

    Construir Evidência Molecular para Decisões de Candidatos ASO e siRNA

    Os projetos de ASO e siRNA muitas vezes começam com uma pergunta simples: o candidato reduziu o alvo pretendido? Para triagens iniciais, essa resposta pode ser suficiente. Para seleção de lideranças, trabalho de mecanismo ou investigação relacionada à segurança, a sua equipa geralmente precisa de uma visão molecular mais ampla.

    Ajudamo-lo a olhar além do gene-alvo. Com transcriptómica, perfis relacionados com RNA pequeno, suporte à validação direcionada e bioinformática personalizada, a nossa equipa ajuda-o a compreender como um candidato a ASO ou siRNA altera o sistema em torno do alvo.

    Isso significa que pode examinar se as vias a jusante mudam como esperado, se os transcritos não-alvo mudam e se surgem assinaturas associadas a imunidade, inflamação, stress ou toxicidade no modelo testado.

    Da Silenciação Genética a Evidências Ómicas Interpretabis

    A redução do alvo é apenas uma parte da história. Um candidato pode reduzir o transcrito pretendido, mas criar alterações de expressão amplas em outros locais. Outro pode mostrar uma redução moderada, mas produzir um perfil de via mais limpo. Os dados ómicos ajudam a trazer essas diferenças à tona.

    A nossa solução de omics para o desenvolvimento de fármacos ASO e siRNA conecta o design de candidatos, agrupamento de amostras, dados de sequenciação e resultados prontos para interpretação. Focamo-nos em ajudar a sua equipa a responder não apenas à pergunta "o que mudou?", mas também "quais mudanças são relevantes para a próxima decisão de investigação?"

    Onde Esta Solução Se Encaixa na Pesquisa de Descoberta e Segurança

    Esta solução é útil quando a sua equipa precisa de evidência molecular para triagem de candidatos, validação de alvos, revisão de alvos fora do contexto, comparação de doses ou tempos, seleção de modelos ou exploração de mecanismos relacionados com a segurança.

    Podemos apoiar estudos in vitro, estudos com modelos celulares, estudos baseados em tecidos, investigação com modelos animais e desenhos de comparação multi-condição. O fluxo de trabalho final depende da sua modalidade, tipo de amostra, espécie, número de candidatos, grupos de dose, pontos de tempo e desfecho biológico.

    ASO and siRNA candidate decision evidence from knockdown to pathway response

    O que a CD Genomics o Ajuda a Avaliar

    • Se o tratamento com ASO ou siRNA produz a resposta alvo esperada.
    • Quais genes e vias a jusante mudam após o tratamento?
    • Se existem sinais fora do alvo em todo o transcriptoma.
    • Se os caminhos associados à imunidade, inflamação, stress ou toxicidade estão ativados.
    • Como os candidatos se comparam em relação à dose, ponto temporal, tecido ou modelo.
    • Quais genes, vias ou assinaturas devem ser priorizados para validação de seguimento?

    As nossas Capacidades de Serviço para Suporte à Investigação e Desenvolvimento de ASO / siRNA

    Apoiamo a investigação de ASO e siRNA como um fluxo de trabalho de projeto, não como um ensaio isolado. A sua equipa pode apresentar-nos RNA extraído, pellets celulares tratados, amostras de tecido, um painel de candidatos ou um desenho experimental existente. Ajudamos a mapear esses inputs para o plano de sequenciação e análise mais útil.

    O objetivo final é um pacote de dados que a sua equipa possa realmente utilizar: resumos de QC, matrizes de expressão, resultados de expressão diferencial, saídas de vias, figuras, tabelas de comparação de candidatos e notas de método que possam ser revistas pelas equipas de biologia, farmacologia, segurança e bioinformática.

    Transcriptómica para Knockdown e Resposta a Vias

    RNA-Seq é frequentemente a principal camada de dados para a ASO e a profilagem da resposta a siRNA. Pode mostrar se o alvo pretendido está reduzido, como os genes a montante respondem e se o tratamento cria alterações transcricionais mais amplas.

    Para estudos de ASO e siRNA, a transcriptómica pode ser utilizada para comparar grupos tratados versus grupos de controlo, múltiplos candidatos, níveis de dose, pontos temporais, tecidos ou modelos celulares. Também ajudamos a identificar genes e vias que podem merecer validação direcionada.

    Perfilagem de RNA pequeno e miRNA para pesquisa de siRNA

    Para estudos de siRNA, a biologia do pequeno RNA pode tornar-se importante quando o projeto envolve efeitos na região de semente, regulação semelhante à de miRNA, perturbação de pequenos RNA endógenos ou alterações na regulação do RNA. Nesses casos, Sequenciação de RNA pequeno pode adicionar uma camada útil.

    Este módulo não é necessário para todos os projetos. Geralmente, consideramos a sua utilização quando a questão de pesquisa envolve a abundância de pequenos RNAs, alterações em RNAs regulatórios, vias relacionadas com miRNAs ou uma análise mais profunda da resposta molecular associada a siRNAs.

    Validação Direcionada e Suporte à Comparação de Candidatos

    Após a análise do transcriptoma, muitas equipas precisam de uma lista mais curta de genes ou vias para seguimento. A CD Genomics pode ajudar a preparar listas de candidatos para validação direcionada com base na expressão diferencial, relevância das vias, preocupações com off-target, assinaturas de resposta imune ou biologia específica do projeto.

    Para um acompanhamento focado, Sequenciação de RNA Direcionada pode ser útil quando a sua equipa quiser acompanhar transcrições selecionadas em amostras adicionais, designs candidatos ou condições de estudo.

    Bioinformática Personalizada para Sinais de Off-Target e Relacionados com a Segurança

    Os estudos de ASO e siRNA muitas vezes precisam de mais do que uma tabela padrão de expressão diferencial. O nosso Serviços de Bioinformática ajudar a conectar as mudanças de expressão com o design do candidato, grupo de tratamento, biologia da via, dose, ponto temporal e resposta específica do modelo.

    Podemos apoiar a revisão personalizada de padrões relacionados a sementes de siRNA, genes candidatos relacionados à hibridização de ASO, enriquecimento de vias imunes, sinalização inflamatória, resposta ao stress, resposta tecidual e comparação entre candidatos cruzados quando estas análises se adequam ao desenho do estudo.

    Questões de Pesquisa que Esta Solução Pode Abordar

    Diferentes estágios da pesquisa de ASO e siRNA requerem diferentes tipos de evidência. A descoberta inicial pode centrar-se na redução do alvo. A triagem de candidatos pode focar-se na classificação. A pesquisa relacionada com a segurança pode concentrar-se na ativação indesejada de vias ou na perturbação ampla do transcriptoma.

    Ajudamos a traduzir essas questões em um design prático de sequenciamento e análise.

    Questão de Pesquisa Camada de Dados Recomendada Saída Típica Como Apoia a Sua Decisão
    O alvo pretendido foi reduzido? RNA-seq ou validação de RNA direcionada Perfil de expressão alvo, tabela de expressão diferencial Confirma se o candidato produz o efeito esperado ao nível do transcrito.
    A resposta do percurso corresponde à biologia esperada? RNA-seq com enriquecimento de vias GO / KEGG / enriquecimento de vias, mapa de calor, gráficos de vias Mostra se a redução do alvo está ligada a uma resposta biológica relevante.
    Existem alterações fora do alvo em todo o transcriptoma? RNA-seq com bioinformática focada em alvos fora do alvo Revisão da mudança de expressão, conjuntos de genes afetados, lista de potenciais alvos fora do alvo. Ajuda a distinguir a biologia pretendida de alterações de expressão mais amplas e não intencionais.
    Estão ativados os caminhos imunes ou inflamatórios? RNA-seq com análise focada em vias metabólicas Revisão de vias imunes, painéis de genes inflamatórios, resultados de enriquecimento Suporta a interpretação da resposta molecular relacionada com a segurança no modelo testado.
    Qual candidato parece mais limpo em todos os pontos finais? Transcritos de múltiplos candidatos e matriz de comparação Tabela de classificação de candidatos por ponto final Ajuda a comparar o knockdown, a resposta da via, o sinal fora do alvo e o estado de QC em conjunto.

    O Candidato Está a Produzir a Resposta de Derrube Pretendida?

    Comparamos amostras tratadas e de controlo para medir a expressão do alvo e as alterações na expressão a jusante. Isso ajuda a sua equipa a determinar se a redução observada é consistente, biologicamente relevante e se vale a pena estender para condições de estudo adicionais.

    Existem alterações fora do alvo em todo o transcriptoma?

    A caracterização do transcriptoma pode revelar alterações na expressão além do alvo pretendido. Para siRNA, uma preocupação é a regulação off-target mediada pela semente. Para ASO, uma preocupação é a interação dependente de hibridização com transcritos não intencionais. O desenho da análise deve refletir o tipo de oligonucleotídeo, o design da sequência e o modelo de estudo.

    Estão ativados os caminhos imunes ou inflamatórios?

    Alguns candidatos a ASO e siRNA podem produzir assinaturas moleculares de stress, imunidade ou inflamação em modelos ou configurações de tratamento específicos. O RNA-seq pode ajudar a identificar se estes caminhos estão a mudar e quais genes contribuem para o sinal.

    Como é que a Dose, o Ponto Temporal, o Tecido ou o Modelo Alteram a Resposta?

    Uma única condição pode não revelar todo o padrão de resposta. A transcriptómica de dose-resposta ou de curso temporal pode ajudar a separar os efeitos precoces do tratamento, a resposta sustentada da via e as alterações de expressão específicas da condição.

    Fluxo de Trabalho desde a Receção da Amostra até ao Pacote de Dados Reutilizável

    Uma vez que as suas amostras entram no projeto, seguimos um fluxo de trabalho combinado de serviço e técnico: revisão do projeto, verificação de amostras e metadados, controlo de qualidade do RNA, preparação da biblioteca, sequenciação, controlo de qualidade dos dados primários, análise bioinformática, entrega do relatório e interpretação de acompanhamento.

    ASO and siRNA omics workflow from sample intake to reusable data packageEste fluxo de trabalho foi concebido para proteger a rastreabilidade do amostra aos dados. Em cada etapa, verificamos se os dados estão prontos para o próximo passo e se os resultados finais serão úteis para a sua revisão interna.

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    Receção de Projetos e Mapeamento de Pontos Finais

    Começamos por rever a sua modalidade ASO ou siRNA, gene-alvo, espécie, modelo, grupos de tratamento, níveis de dose, pontos de tempo, tipo de amostra e objetivo pretendido. Isso ajuda-nos a decidir se o seu projeto necessita de RNA-seq, sequenciação de pequenos RNAs, sequenciação de RNA direcionada, bioinformática personalizada ou um fluxo de trabalho combinado.

    Também esclarecemos a estrutura de comparação. O seu projeto pode comparar amostras tratadas versus não tratadas, múltiplos candidatos contra um controlo, vários grupos de dose, diferentes tecidos ou pontos de tempo após o tratamento.

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    Planeamento de Amostras e Design de Grupos

    Antes da submissão da amostra, revemos o tipo de amostra, o estado da extração, a quantidade de entrada estimada, a integridade do RNA, as condições de armazenamento e os metadados. Para estudos de ASO e siRNA, os metadados são especialmente importantes, pois a interpretação depende da identificação do candidato, da dose, do tempo de exposição, das condições de tratamento, do grupo de replicação, do modelo de tecido ou celular e do tipo de controlo.

    Metadados claros ajudam-nos a construir a matriz de análise corretamente e reduzem a ambiguidade na interpretação dos resultados.

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    Controlo de Qualidade do RNA e Preparação da Biblioteca

    Após a chegada das amostras, avaliamos a quantidade de RNA, concentração, pureza e integridade. As amostras que cumprem os critérios do projeto acordados avançam para a preparação da biblioteca.

    Para o perfilamento do transcriptoma, o processo técnico pode incluir fragmentação de RNA ou etapas de enriquecimento/depleção conforme apropriado, síntese de cDNA, ligadura de adaptadores ou amplificação, controlo de qualidade da biblioteca e sequenciação. Para a sequenciação de pequenos RNAs, o fluxo de trabalho é ajustado para capturar espécies de pequenos RNAs e preparar bibliotecas de tamanho apropriado.

    A QC da biblioteca ajuda a confirmar se as bibliotecas preparadas são adequadas para sequenciação antes do início da geração de dados.

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    Sequenciação e QC de Dados Primários

    A sequenciação produz leituras brutas que são processadas em dados limpos. O controlo de qualidade primário pode incluir a revisão da qualidade das leituras, o corte de adaptadores, a distribuição do comprimento das leituras, a qualidade das bases, o resumo de mapeamento ou alinhamento, a revisão de duplicações quando relevante e verificações de consistência a nível de amostra.

    Estes passos de QC ajudam a identificar problemas técnicos antes de começar a interpretação biológica.

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    Expressão Diferencial, Revisão de Vias e Análise Focada em Alvos Indesejados

    Após o processamento primário, geramos matrizes de expressão e comparamos os grupos de amostras planeados. A análise de expressão diferencial identifica genes que mudam entre condições. O enriquecimento de vias ajuda a organizar essas mudanças em temas biológicos.

    Para estudos de ASO e siRNA, podemos adicionar uma análise focada em padrões relacionados a off-target, vias imunes ou inflamatórias, resposta ao stress, comparação de candidatos, tendência de dose, tendência temporal ou resposta específica de tecido quando o desenho do estudo o suportar.

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    Interpretação da Entrega do Relatório e Acompanhamento

    O seu pacote final pode incluir dados brutos, dados processados, ficheiros de controlo de qualidade, tabelas de resultados, visualizações, saídas de caminhos, notas de software ou parâmetros, e um relatório. O nosso objetivo é fornecer ficheiros que a sua equipa interna possa reutilizar, inspecionar e integrar com outras informações do projeto.

    Após a entrega, podemos ajudar a sua equipa a rever a estrutura dos resultados e a identificar quais genes, vias ou sinais a nível de candidatos podem ser úteis para validação posterior.

    Requisitos de Amostra e Entradas de Design do Estudo

    As necessidades de amostra variam consoante o tipo de amostra, estado de extração, estratégia de sequenciação e objetivo do estudo. A tabela abaixo fornece valores iniciais práticos para discussão do projeto. Os requisitos finais de entrada devem ser confirmados antes da submissão da amostra.

    Tipo de Amostra Entrada Recomendada Controlo de Qualidade Metadados Requeridos Notas
    RNA total para RNA-seq ≥1 μg preferido; ≥100 ng pode ser revisto para fluxos de trabalho de baixo input Concentração, pureza, integridade; RIN ≥7 preferido para RNA de alta qualidade. ID do candidato, dose, ponto temporal, controlo, replicado, espécie, tipo de tecido/célula Melhor para knockdown em todo o transcriptoma e perfilagem da resposta a vias.
    Pellets celulares ≥1 × 106 células preferidas Estado da célula, condição de armazenamento, QC da extração de RNA após processamento Condição de tratamento, ID do candidato, tempo de exposição, grupo de replicação Adequado quando a extração de RNA está incluída no fluxo de trabalho do projeto.
    Tecido fresco congelado ≥30 mg preferido onde disponível Rendimento de RNA, pureza, integridade, risco de degradação Tipo de tecido, método de recolha, grupo de tratamento, dose, ponto temporal Útil para a resposta dos tecidos e perfilagem molecular relacionada à segurança.
    Amostra de sequenciação de RNA pequeno ≥1 μg de RNA total preferido Adequação da fração de RNA pequeno, qualidade total do RNA, pureza design de siRNA, grupo de tratamento, modelo, dose, ponto temporal Considere quando a resposta relacionada a RNA pequeno ou miRNA é central.
    Amostras de baixo input ou difíceis Revisão caso a caso necessária Quantidade de entrada, degradação, risco de inibidor, método de extração Histórico de amostra, armazenamento, método de coleta, agrupamento biológico Analisamos a viabilidade antes de recomendar um fluxo de trabalho.

    Tipos de Amostras Comumente Usados em Estudos de ASO / siRNA

    Os materiais de partida comuns incluem RNA extraído, pellets celulares, modelos celulares tratados, tecidos frescos congelados e amostras biológicas específicas do modelo. Para cada tipo de amostra, confirmamos o método de extração, as condições de armazenamento, a qualidade esperada do RNA e os metadados de agrupamento antes do início do projeto.

    Metadados que Melhoram a Interpretação

    Para estudos de ASO e siRNA, os metadados não são uma formalidade. Eles afetam diretamente a interpretação. No mínimo, por favor, forneça o ID do candidato, sequência ou grupo de design quando apropriado, gene alvo, grupo de tratamento, dose, ponto temporal, grupo de controlo, replicado biológico, espécie, tipo de tecido ou célula, e qualquer fenótipo observado ou ponto final do ensaio.

    Análise e Resultados de Bioinformática

    A bioinformática é central para esta solução. Sem ela, os dados de sequenciação de ASO e siRNA podem tornar-se uma longa lista de genes sem um caminho de decisão claro. Estruturamos a análise para ajudar a sua equipa a ver a resposta ao alvo, as alterações de expressão amplas, as mudanças a nível de vias, as diferenças entre candidatos e as prioridades de acompanhamento.

    Entregas Mínimas

    • Dados de sequenciação brutos
    • Leituras limpas ou leituras processadas
    • Resumo de QC de sequenciação
    • Resumo de alinhamento ou mapeamento, quando aplicável.
    • Matriz de expressão génica
    • Tabela de expressão diferencial
    • Gráfico de vulcão
    • Mapa de calor ou gráfico de agrupamento
    • PCA ou gráfico de relação de amostras
    • Resultados de enriquecimento de vias
    • Métodos e notas de parâmetros
    • Relatório de análise

    Módulos de Análise Adicionais Opcionais

    • revisão do enriquecimento de off-target na região seed do siRNA
    • Revisão de candidatos off-target dependentes de hibridização ASO
    • Análise da tendência de expressão da resposta à dose
    • Análise da resposta transcriptómica ao longo do tempo
    • Análise focada em vias imunes ou inflamatórias
    • Matriz de comparação entre candidatos
    • Comparação da resposta de tecido ou tipo celular
    • Integração multi-ômica quando dados adicionais estão disponíveis
    • Lista de candidatos para validação direcionada para acompanhamento de qPCR

    Ficheiros Reutilizáveis para Equipas Internas de Biologia e Bioinformática

    A sua equipa interna pode precisar de mais do que um relatório em PDF. Podemos fornecer tabelas prontas para análise e saídas de ficheiros, como ficheiros FASTQ, matrizes de contagem, matrizes de expressão normalizadas, tabelas de expressão diferencial, tabelas de enriquecimento, resumos de QC, figuras de vias e notas de parâmetros.

    Estas saídas ajudam a sua equipa de biologia a rever o comportamento dos candidatos, a sua equipa de bioinformática a inspecionar a estrutura da análise e a sua equipa de projeto a decidir quais descobertas devem avançar para validação ou para experiências adicionais.

    Bioinformatics deliverables for ASO and siRNA off-target and pathway analysis

    Escolhendo a Estratégia Omics Certa para o Seu Projeto ASO / siRNA

    Nem todos os projetos precisam de todos os ensaios. Um bom desenho de estudo começa com a decisão que a sua equipa precisa de tomar. Ajudamo-lo a selecionar a camada de dados mais útil com base na modalidade, estágio do candidato, tipo de amostra e questão de risco.

    ASO vs siRNA: Quais as Alterações no Design da Análise

    Dimensão Projetos ASO Projetos de siRNA Por Que É Importante
    Mecanismo principal a considerar Pode envolver degradação mediada por RNase H, modulação de splicing ou bloqueio estérico, dependendo do design. Normalmente envolve a interferência de RNA mediada por RISC através da seleção da fita guia. A leitura molecular esperada depende de como o candidato atua no RNA.
    Leitura primária Redução do RNA alvo, efeito de splicing ou isoforma, e resposta do transcriptoma a jusante Redução do mRNA alvo e resposta de expressão a jusante Determina se o RNA-seq padrão é suficiente ou se é necessário um seguimento de isoformas ou direcionado.
    Preocupação comum com alvos fora do esperado Ligação dependente de hibridização a transcritos de RNA não intencionais Efeitos do transcriptoma mediados por sementes ou relacionados com a sequência Orienta a estratégia de revisão de off-target e o foco em bioinformática.
    Sinais moleculares relacionados com a segurança Resposta imune, resposta tecidual, padrões associados à química ou redução não intencional de transcritos. Resposta imune, resposta relacionada com a entrega, alterações de expressão relacionadas com a semente ou perturbação de vias. Ajuda a determinar se a análise focada em vias deve ser adicionada.
    Camadas de dados úteis RNA-seq, validação direcionada, análise consciente de isoformas quando relevante, revisão personalizada de off-target. RNA-seq, análise de pequenos RNAs, revisão da região de semente, análise de vias. Permite que o fluxo de trabalho corresponda à modalidade em vez de impor um único modelo a todos os projetos.

    RNA-Seq vs Validação Direcionada vs Perfilagem de Pequenos RNAs

    Abordagem Melhor Usado Quando Força Limitação Papel Típico nesta Solução
    RNA-seq Você precisa de informações sobre knockdown em todo o transcriptoma, vias e alvos não intencionais. Amplo, amigável à descoberta, útil para mudanças inesperadas. Requer um design de estudo cuidadoso e interpretação bioinformática. Camada de dados principal para perfilagem de respostas
    Validação de RNA direcionado Já sabes quais genes ou vias precisam de um acompanhamento mais focado. Eficiente para alvos selecionados e painéis de seguimento maiores. Não capta mudanças amplas e inesperadas no transcriptoma. Validação de seguimento ou comparação de candidatos
    Sequenciação de RNA pequeno O projeto envolve a abundância de pequenos RNAs, regulação semelhante a miRNA ou efeitos regulatórios de RNA relacionados a siRNA. Adiciona uma pequena camada de RNA que o RNA-seq por si só pode não abordar. Não é necessário para todos os projetos de ASO ou siRNA. Adicional opcional para designs focados em siRNA selecionados
    Transcriptómica ao longo do tempo É necessário distinguir a resposta inicial da resposta sustentada. Mostra a dinâmica de resposta Requer mais amostras e uma estrutura de comparação cuidadosa. Útil para estudos de mecanismo e duração da resposta.
    Integração multi-ómica Os sinais transcriptómicos precisam de ser ligados a outros dados moleculares ou fenotípicos. Fornece uma visão biológica mais ampla Necessita de pontos finais claros e tipos de dados compatíveis. Opcional para investigação de mecanismos complexos ou relacionados com a segurança.

    Regras de Seleção por Fase do Projeto e Tipo de Risco

    • Utilize RNA-seq quando for necessária uma resposta em todo o transcriptoma e perfilagem de off-target.
    • Adicione análise relacionada a pequenos RNAs ou miARNs quando os efeitos da semente de siRNA ou as mudanças regulatórias de RNA forem centrais.
    • Adicione validação direcionada quando os principais genes ou vias necessitarem de confirmação adicional.
    • Adicione um desenho de dose-resposta ou de curso temporal quando a dinâmica da resposta for importante.
    • Adicione a integração multi-ômica apenas quando os sinais transcriptómicos precisarem ser ligados a camadas biológicas adicionais.
    • Mantenha o fluxo de trabalho modular; não adicione ensaios que não respondam à questão do projeto.

    Referências

    1. SeedMatchR: identificar efeitos fora do alvo mediado por regiões de sementes de siRNA em experiências de RNA-seq
    2. Avaliação do Risco de Alvos Indesejados Dependente da Hibridação para Oligonucleotídeos Terapêuticos: Recomendações Atualizadas da Indústria
    3. Avaliação dos efeitos fora do alvo de oligonucleotídeos antissenso gapmer utilizando células humanas
    4. Avaliação de Segurança Pré-Clínica de Oligonucleotídeos Terapêuticos
    5. Considerações de Farmacologia Clínica para o Desenvolvimento de Terapias com Oligonucleotídeos

    Resultados da Demonstração: O Que os Seus Dados de ASO / siRNA Omics Podem Mostrar

    O padrão exato dos resultados depende do seu candidato, modelo, qualidade da amostra e desenho do estudo. Os exemplos abaixo mostram os tipos de saídas que podem ser incluídas em um pacote de dados de omics de ASO e siRNA.

    ASO and siRNA knockdown and pathway response demo volcano and enrichment panel

    Visão Geral da Redução e Resposta da Via

    Um gráfico de vulcão pode mostrar genes que são alterados entre grupos de tratamento e controle. Um painel de enriquecimento de vias pode então agrupar esses genes em temas biológicos, como vias associadas a alvos, sinalização imune, resposta ao stress, resposta metabólica ou processos relevantes para doenças.

    Isto ajuda a sua equipa a passar de uma leitura de alvo único para uma visão mais ampla da resposta ao tratamento.

    Off-target expression shift visualization for ASO and siRNA transcriptomics

    Visualização de Deslocamento de Expressão Fora do Alvo

    Um mapa de calor, um gráfico de distribuição cumulativa ou um gráfico de deslocamento de expressão ciente da correspondência de sementes podem ajudar a destacar se um subconjunto de genes apresenta uma ampla downregulação ou um movimento de expressão inesperado após o tratamento.

    Para estudos de siRNA, isso pode ser útil ao rever potenciais efeitos mediados por sementes. Para estudos de ASO, uma revisão focada pode analisar transcritos candidatos com complementaridade de sequência ou alterações de expressão relevantes.

    ASO and siRNA candidate ranking matrix for knockdown off-target and immune response review

    Resumo da Classificação dos Candidatos

    Quando múltiplos candidatos são testados, uma matriz candidato-por-ponto final pode reunir sinais chave. Por exemplo, as linhas podem representar candidatos e as colunas podem resumir a redução do alvo, a resposta da via, o sinal fora do alvo, a ativação da via imune, a QC da amostra e a prioridade de acompanhamento.

    Este formato oferece às equipas de projeto uma visão mais clara sobre quais candidatos podem merecer um estudo mais aprofundado.

    Perguntas Frequentes

    1. Como pode o RNA-seq apoiar a avaliação de candidatos a ASO e siRNA?

    A RNA-seq pode mostrar se o alvo pretendido muda e como o transcriptoma mais amplo responde. Para estudos de ASO e siRNA, isso ajuda a conectar a modulação do alvo com a resposta da via, revisão de off-target, assinaturas relacionadas com o sistema imunitário e comparação de candidatos.

    2. Esta solução pode ajudar a distinguir a resposta no alvo de alterações transcriptómicas fora do alvo?

    Pode ajudar a sua equipa a rever o padrão. Comparamos grupos de tratamento planeados, identificamos genes expressos diferencialmente, analisamos o comportamento das vias e adicionamos uma análise focada em alvos não intencionais quando suportada pelo design do candidato e pela estrutura do estudo. O resultado é um perfil molecular mais claro para decisões de investigação subsequentes.

    3. Quando devemos adicionar sequenciação de pequenos RNAs a um projeto de siRNA?

    A sequenciação de pequenos RNAs é mais útil quando a abundância de pequenos RNAs, a regulação semelhante a miRNA, a biologia da região-semente ou alterações regulatórias de RNA fazem parte da questão de investigação. Não é necessária para todos os projetos de siRNA.

    4. Que informações de amostra devemos fornecer antes do design do projeto?

    Por favor, forneça informações sobre o tipo de amostra, espécie, gene alvo, informações sobre ASO ou candidatos a siRNA, grupo de tratamento, dose, ponto temporal, grupo de controlo, número de repetições, modelo de tecido ou celular e quaisquer resultados de ensaios conhecidos. Esta informação ajuda-nos a recomendar um fluxo de trabalho adequado.

    5. A CD Genomics pode comparar múltiplos candidatos a ASO ou siRNA?

    Sim. Podemos suportar designs com múltiplos candidatos quando a estrutura de agrupamento é clara. Comparações típicas podem incluir redução de alvo, resposta de via, alteração na expressão em todo o transcriptoma, sinal de via imune ou inflamatória, e estado de controlo de qualidade.

    6. Quais serão os entregáveis que a nossa equipa interna receberá?

    Dependendo do âmbito do projeto, os entregáveis podem incluir dados brutos, leituras processadas, resumos de QC, matrizes de expressão, tabelas de expressão diferencial, resultados de enriquecimento, figuras, tabelas de comparação de candidatos, notas de método e um relatório de análise.

    7. Pode a ativação de vias imunes ou inflamatórias ser analisada a partir de dados de transcriptómica?

    Sim, se o desenho do estudo e a qualidade da amostra suportarem a análise. Podemos rever genes relacionados com a imunidade, vias inflamatórias, assinaturas de resposta ao stress e resultados de enriquecimento para ajudar a sua equipa a compreender a resposta molecular associada ao tratamento no modelo testado.

    8. A validação direcionada ainda é necessária após o RNA-seq?

    Frequentemente, sim. O RNA-seq é útil para descobertas amplas e classificação. A validação direcionada é útil quando a sua equipa deseja confirmar genes ou vias selecionadas em mais amostras, condições ou designs candidatos.

    9. Este fluxo de trabalho pode suportar estudos de dose-resposta ou de curso temporal?

    Sim. Os desenhos de dose-resposta e de curso temporal podem ser integrados na estrutura de agrupamento da amostra. Estes desenhos são úteis quando a sua equipa precisa de compreender se uma resposta está associada à dose, é transitória, sustentada ou específica do modelo.

    10. Como começamos uma discussão sobre o projeto?

    Partilhe a sua modalidade, tipo de amostra, número do candidato, espécie, modelo, grupos de dose, pontos de tempo e objetivo da investigação. A nossa equipa pode então ajudar a mapear o seu objetivo de estudo a um fluxo de trabalho de sequenciação e bioinformática.

    Estudo de Caso: Detecção de Efeitos Off-Target Mediados por Sementes de siRNA com RNA-Seq

    Este caso é baseado no artigo de acesso aberto. SeedMatchR: identificar efeitos fora do alvo mediado por regiões de semente de siRNA em experiências de RNA-seq.

    Fundo

    O tratamento com siRNA destina-se a reduzir a expressão de um mRNA alvo através da complementaridade da fita guia. No entanto, a região de semente do siRNA também pode comportar-se de forma semelhante a um miRNA e afetar transcritos não intencionais. Isso cria um desafio prático para a avaliação de candidatos a siRNA: um candidato pode mostrar redução do alvo enquanto também produz alterações transcricionais mais amplas.

    O artigo SeedMatchR abordou este desafio ao desenvolver um fluxo de trabalho para detectar e visualizar efeitos fora do alvo mediado por sementes em experiências de RNA-seq. O artigo concentrou-se em conectar a análise de expressão diferencial com correspondências de sementes previstas, de modo que os investigadores possam examinar se os genes com correspondências de sementes apresentam deslocamentos acumulados na expressão.

    Métodos

    Dados de Entrada

    • sequência guia de siRNA
    • Tabela de resultados de expressão diferencial
    • Anotação GTF específica por espécie
    • Conjunto de sequências de DNA específicas de características

    Fluxo de Análise

    • Definição de região-semente
    • Anotação de correspondência de sementes prevista
    • Comparação de expressão a nível de gene
    • Visualização da distribuição de expressão

    Revisão de Saída

    • Anotação da contagem de correspondências de sementes
    • Genes com e sem correspondências de sementes
    • Revisão de deslocamento de expressão baseada em ECDF
    • Interpretação de padrões fora do alvo

    O estudo apresentou o SeedMatchR como um pacote R que trabalha com resultados de expressão diferencial de RNA-seq. O SeedMatchR anota genes com contagens de correspondências de sementes previstas e permite que os investigadores comparem as alterações de expressão entre genes com e sem correspondências de sementes. O artigo também utilizou dados de RNA-seq disponíveis publicamente de experimentos com siRNA para demonstrar a deteção de padrões fora do alvo mediados por sementes.

    Resultados

    Figura 1 no artigo mostra o fluxo de trabalho completo do SeedMatchR e exemplos de aplicações. A figura inclui a definição de sementes de siRNA, entradas e saídas necessárias, e a deteção de efeitos off-target mediada por sementes baseada em ECDF.

    Na Figura 1D, o SeedMatchR detetou uma alteração significativa na distribuição do log2 mudanças de dobra para genes com uma correspondência de semente em comparação com genes sem correspondências de semente. O resultado do teste de Kolmogorov-Smirnov reportado foi Dstat = 0,138674 com Valor-p = 7,74 × 10−8.

    A Figura 1E mostrou que uma modificação de ácido nucleico glicólico na região da semente reduziu o sinal fora do alvo. O resultado reportado foi Dstat = 0,049007 com Valor-p = 8,239 × 10−2Este contraste mostra como o RNA-seq e a bioinformática consciente das sementes podem ajudar a comparar designs de siRNA pelo comportamento fora do alvo, não apenas pela redução do alvo.

    SeedMatchR Figure 1 siRNA seed-mediated off-target analysis workflow using RNA-seq dataA Figura 1 do SeedMatchR ilustra como a sequência guia de siRNA, a definição de seed, os dados de expressão diferencial e as anotações de transcritos podem ser integrados para detectar efeitos off-target mediados por seed em experiências de RNA-seq.

    Conclusão

    Este caso apoia o valor de combinar experiências de siRNA com RNA-seq e uma revisão bioinformática dedicada. Para as equipas de investigação de ASO e siRNA, demonstra porque um pacote de dados útil deve incluir resultados de expressão diferencial, anotações específicas de candidatos, visualizações e uma revisão estatística dos padrões de expressão relacionados a off-target.

    A Figura 1 é útil para equipas de investigação em ASO e siRNA porque mostra como a informação de sequência, anotação de transcritos, expressão diferencial e visualização podem ser combinadas num único fluxo de trabalho de revisão de off-target.

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    A CD Genomics apoiou uma ampla gama de projetos de sequenciação e bioinformática em genómica, transcriptómica, RNA não codificante e investigação focada em mecanismos. As publicações abaixo não são apresentadas como estudos de caso de ASO ou siRNA. Elas estão incluídas como exemplos relacionados de investigação de clientes que utilizam serviços de sequenciação ou focados em RNA.

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