A CD Genomics está a oferecer plataformas para análise epigenómica em todo o genoma, cada uma projetada para acomodar uma ampla gama de tipos de amostras e atender às suas necessidades específicas de pesquisa, permitindo que os investigadores analisem facilmente as alterações epigenéticas. Esta informação ajudará não apenas a entender o papel da metilação do DNA, mas também a identificar alvos para tratamento terapêutico.
As modificações epigenéticas são modificações reversíveis que afetam a expressão génica sem alterar a sequência de DNA e podem ser herdadas durante a divisão celular. Duas das modificações epigenéticas mais caracterizadas são a metilação do DNA e a modificação da cromatina. As modificações epigenéticas desempenham papéis importantes na expressão e regulação génica, e estão envolvidas em numerosos processos celulares, como na diferenciação, desenvolvimento e tumorigenese. A metilação do DNA é mais frequentemente observada na posição C5 da citosina, seguida pela guanina (local CpG) em vertebrados, ou em locais não CpG, como CHG e CHH em plantas ou células-tronco embrionárias de mamíferos. A metilação do DNA é estabelecida e mantida por metiltransferases de DNA (DNMT1, DNMT3a e DNMT3b).
A epigenómica pode ser dividida em duas categorias principais:
1. EpigenomaO epigenoma abrange uma vasta gama de modificações químicas que ocorrem no DNA e nas histonas dentro da cromatina, além de alterações estruturais na própria cromatina. Estas modificações, independentes da sequência genómica subjacente, fornecem informações regulatórias críticas. Os seguintes são componentes-chave do epigenoma:
(1) Modificações de DNAInclui 5-metilcitosina (5mC) e 5-hidroximetilcitosina (5hmC).
(2) Modificações de HistonasAbrange modificações como H3K27me3, H3K4me3 e H3K27ac.
(3) Mudanças a Nível da CromatinaEnvolve alterações mediadas por proteínas que se ligam ao DNA, como os fatores de transcrição.
2. EpitranscriptomaEste termo refere-se de forma ampla a todas as modificações pós-transcricionais que não alteram a sequência de RNA em si. Atualmente, mais de 100 modificações químicas diferentes foram identificadas no RNA, incluindo N6-metiladenosina (m6A), N1-metiladenosina (m1A) e pseudouridina (Ψ).
A informação de metilação do DNA pode ser perdida durante manipulações padrão de biologia molecular, como clonagem molecular em bactérias e PCR, devido à falta de manutenção das metiltransferases de DNA. Várias técnicas incluem imunoprecipitação de DNA metilado (MeDIP), sequenciação por bisulfito (BS-seq)e sequenciação de bisulfito com representação reduzida (RRBS) foram propostos para preservar a informação de metilação do DNA e, simultaneamente, transformá-la em sinais quantitativos e mensuráveis. Ao combinar com sequenciação de alto rendimentoEstas técnicas forneceram informações abrangentes e fiáveis sobre a metilação do DNA em todo o genoma. Um breve esboço e fluxo de trabalho das diferentes tecnologias de sequenciação de metilação do DNA baseadas em NGS é apresentado na Figura 1 abaixo.
Figura 1. Diferentes métodos de análise de metilação de DNA baseados em NGS (Jeong) et al.., 2016).
Em termos do mérito e do viés destes métodos, BS-seq e RRBS pode gerar um metiloma de DNA de baixa resolução, enquanto MeDIP-seq pode apenas gerar enriquecimento relativo de regiões específicas ao longo do genoma. A imunoprecipitação de cromatina (ChIP) oferece uma ferramenta vantajosa para estudar os níveis de metilação de histonas associados a uma região promotora de um gene específico entre tecidos normais e doentes. Identificar os alvos genéticos de proteínas ligadoras de DNA e revelar o mecanismo de interação proteína-DNA é crucial para compreender os processos celulares. A sequenciação de imunoprecipitação de cromatina (ChIP-seq) permite-lhe tirar o máximo proveito dos seus estudos de cromatina com um viés de sequenciação mínimo.
A metilação do DNA e do RNA envolve a adição enzimática de um grupo metilo (CH3) a um átomo específico na molécula de DNA ou RNA, catalisada por metiltransferases. No RNA celular, já foram identificados mais de 100 tipos de modificações químicas. Entre estas, existem vários tipos de metilação do RNA, incluindo a metilação m6A do RNA, a metilação m5C do RNA, a metilação m1A do RNA e a metilação m7G do RNA. Atualmente, o tipo mais proeminente e enriquecido é a metilação m6A do RNA, que se refere à metilação do átomo de nitrogênio na 6ª posição da adenina em moléculas de RNA (N6-metiladenosina, m6A). Esta modificação é a mais comum entre as modificações pós-transcricionais no mRNA eucariótico, representando 80% das modificações de metilação do RNA.

Os métodos atuais para detectar a metilação de RNA incluem principalmente o seguinte:
As nossas soluções de metilação do DNA incluem:
A Sequenciação de Bisulfito de Genoma Inteiro fornece uma visão abrangente dos padrões de metilação do DNA em todo o genoma, permitindo a análise de citosinas metiladas e não metiladas.
Esta metodologia de sequenciação captura e examina seletivamente regiões genómicas definidas, facilitando a análise precisa e económica dos padrões de metilação do DNA.
A Sequenciação de Bisulfito com Representação Reduzida é um método que se concentra num subconjunto do genoma, oferecendo um equilíbrio entre a cobertura do genoma e a relação custo-eficácia para a análise de metilação do DNA.
A sequenciação MeDIP facilita o enriquecimento e a análise de fragmentos de DNA metilado, oferecendo informações valiosas sobre os padrões de metilação do DNA e as suas potenciais implicações funcionais.
A Sequenciação por Imunoprecipitação de Cromatina (ChIP-Seq) é um método poderoso para identificar interações proteína-DNA, elucidar locais de ligação de fatores de transcrição e explorar modificações epigenéticas.
A Sequenciação por Imunoprecipitação de DNA Hidroximetilado (hMeDIP-Seq) é utilizada para estudar especificamente a hidroximetilação do DNA, uma marca epigenética crucial envolvida na regulação genética.
O ATAC-Seq fornece dados sobre a acessibilidade da cromatina, permitindo a identificação de regiões de cromatina abertas e fechadas dentro do genoma.
A Sequenciação de Próxima Geração de DNA Convertido em Bisulfito (NGS-BSP) é um método utilizado para uma análise abrangente da metilação do DNA, oferecendo informações com resolução de uma única base.
A sequenciação de 6mA do DNA foca na deteção e quantificação de N6-metiladenina (6mA) no DNA, uma marca epigenética emergente.
A Purificação por Afinidade de DNA Sequenciamento (DAP-Seq) é um método utilizado para revelar interacções entre proteínas e DNA, aumentando assim a nossa compreensão das proteínas que se ligam ao DNA e das suas funções na regulação genética.
A Sequenciação por Bisulfito Oxidativo (oxBS-seq) é um método especializado utilizado para discriminar entre 5-metilcitosina (5mC) e 5-hidroximetilcitosina (5hmC) no DNA, elucidando os seus papéis distintos na regulação epigenética.
O nosso serviço de sequenciação 5mC/5hmC de alto rendimento utiliza várias plataformas maduras e estáveis com alta eficiência, simplicidade e precisão para ajudar a sua investigação em epigenética.
As nossas soluções de metilação de RNA incluir:
A sequenciação MeRIP foca nas modificações de RNA, particularmente na N6-metiladenosina (m6A), e ajuda a compreender a regulação pós-transcricional e a dinâmica das modificações de RNA.
A Sequenciação por Imunoprecipitação de RNA (RIP-Seq) é utilizada para explorar interações entre RNA e proteínas, fornecendo informações valiosas sobre as funções das proteínas ligadoras de RNA e o seu impacto na funcionalidade do RNA.
O serviço de sequenciação de metilação de RNA 2'-O (RiboMeth-seq) oferece uma deteção abrangente de modificações de metilação de RNA 2'-O em uma variedade de moléculas de RNA, incluindo snoRNA, tRNA e rRNA. O RiboMeth-seq utiliza principalmente tratamento alcalino ou de íons metálicos para induzir a clivagem aleatória de RNA. As posições de metilação 2'-O exibem resistência à clivagem, permanecendo assim intactas; ao contrário, os locais não metilados são suscetíveis à clivagem ou degradação. Ao identificar os locais que resistem à clivagem, o RiboMeth-seq mapeia efetivamente os locais de metilação 2'-O.
A sequenciação de metilação de RNA por nanoporo é um método que utiliza a tecnologia de nanoporo para sequenciar diretamente moléculas de RNA e detetar as suas modificações de metilação. Esta técnica permite a localização e identificação precisas dos locais de metilação através da análise em tempo real das mudanças no sinal elétrico à medida que as moléculas de RNA passam pelo nanoporo. Com as vantagens da sequenciação direta e de comprimentos de leitura longos, esta tecnologia serve como uma ferramenta poderosa para investigar os papéis da metilação de RNA na expressão génica e na função celular.
Abaixo estão os requisitos de amostra para alguns dos nossos serviços de sequenciação epigenómica. Para informações mais detalhadas, consulte as páginas de serviços específicas. Além disso, se estiver interessado nos nossos serviços, por favor contacte-nos para confirmar os requisitos da amostra de sequenciação.
Tabela 1. Sequenciação epigenómica
| Serviço | Tipo de Amostra | Quantidade Recomendada | Quantidade Mínima | Concentração Mínima |
|---|---|---|---|---|
| MeDIP-Seq/hMeDIP-seq | DNA genómico | ≥ 2 µg | 1 µg | 20 ng/μL |
| WGBS (Bisulfito de Genoma Inteiro) Sequenciação |
DNA genómico Célula Tecido |
≥ 1 μg ≥ 1 x106 ≥ 50 mg |
200 ng |
10 ng/µL |
| RRBS (Bisulfito de representação reduzida) sequenciação) |
DNA genómico Célula Tecido |
≥ 1 μg ≥ 5 x106 ≥ 30 mg |
20 ng 3×103 |
20ng/µL |
| Sequenciação de Bisulfito Direcionada | DNA genómico Célula Tecido |
≥ 500 ng ≥ 1 x106 ≥ 20 mg |
50 ng | 10 ng/µL |
| oxWGBS-Seq | DNA genómico | ≥ 3 µg | 1 µg | 30 ng/µL |
| oxRRBS-Seq | DNA genómico | ≥ 2 µg | 50 ng/μL | |
| oxTBS-Seq | DNA genómico | ≥ 1 µg | 20 ng/μL | |
| Epityper | DN genómico | ≥ 1 µg | ||
| DNA 6mA-IP-Seq | DNA genómico | ≥ 5 µg | 20 ng/μL | |
| ChIP-seq | DNA ChIPado Célula Tecido |
≥ 10 ng ≥ 2 x107 ≥ 500 mg |
5 ng 1×105 |
1 ng/µL |
| DAP-seq | TF Célula Tecido |
≥ 5 µg ≥ 5 x106 ≥ 500 mg |
1 µg 200 mg |
20 ng/µL |
| ATAC-seq | Célula Tecido |
≥ 1 x106 ≥ 500 mg |
5×104 200mg |
1 ng/µL |
Tabela 2. Sequenciação de Epigenómica de RNA
| Serviço | Tipo de Amostra | Quantidade Recomendada | Quantidade Mínima | Concentração Mínima |
|---|---|---|---|---|
| RIP-seq | RNA de IPed Célula Tecido |
≥ 100 ng ≥ 5×107 ≥ 500 mg |
40 ng 200 mg |
5 ng/μL |
| eCLIP-Seq | RNA de IPed Célula Tecido |
≥ 100 ng ≥ 3×107 ≥ 500 mg |
40 ng 200 mg |
5 ng/μL |
| MeRIP (RNA Metilada) Imunoprecipitação |
RNA total Célula Tecido |
≥ 10 μg ≥ 1×107 ≥ 500 mg |
2 μg 200 ng |
1 ng/µL |
| Sequenciação de Bisulfito de RNA (RNA BS-seq) | RNA total Célula Tecido |
≥ 10 μg ≥ 1×107 ≥ 500 mg |
100 mg |
O fluxo de trabalho de análise de dados de sequenciação em epigenómica segue geralmente o esboço apresentado abaixo. Como cada método envolve passos específicos, pode consultar as secções respetivas para procedimentos detalhados de análise de dados.

Abaixo está uma apresentação parcial dos resultados das nossas análises de sequenciação epigenómica. Para informações mais detalhadas, consulte as páginas de serviços específicas.

Referências