A Introdução da Sequenciação de Bibliotecas Pré-fabricadas
A CD Genomics aceita bibliotecas preparadas pelos clientes para sequenciação. Pode submeter as bibliotecas para um teste de QC completo e utilizar o nosso serviço apenas de sequenciação. Fornecemos as plataformas de sequenciação mais avançadas e poderosas, com diferentes capacidades e comprimentos de leitura, para se adequar a qualquer escala de projeto, orçamento e prazo. A nossa biblioteca de QC garante uma geração de clusters otimizada e um máximo de saída de dados para cada corrida. Diferentes amostras podem ser multiplexadas e sequenciadas juntas, desde que tenham o mesmo comprimento de leitura. A nossa equipa altamente experiente oferece consultoria sobre os melhores sequenciadores para diferentes objetivos de investigação. Também oferecemos spike-in de PhiX GRATUITO, demultiplexação (FASTQ) e transferência de dados via FTP.
A sequenciação de bibliotecas pré-fabricadas é uma sequenciação de alto rendimento técnica utilizada para a análise sistemática do genoma, transcriptoma ou outras sequências de ácidos nucleicos de amostras biológicas. Envolve a preparação de ácidos nucleicos da amostra em bibliotecas, seguida de sequenciação utilizando sequenciadores de alto rendimento, gerando assim uma vasta quantidade de dados de sequência para análise posterior. Bibliotecas pré-fabricadas implicam a fragmentação dos ácidos nucleicos da amostra antes da sequenciação e, através de uma série de reações bioquímicas, a incorporação de sequências de adaptadores compatíveis com a plataforma de sequenciação, tornando-as adequadas para sequenciadores de alto rendimento.
Se quiser saber mais sobre sequenciação de bibliotecas pré-fabricadas, pode consultar o nosso artigo "A Introdução e Fluxo de Trabalho da Sequenciação de Bibliotecas Pré-fabricadas."
Vantagens da Sequenciação de Bibliotecas Pré-Fabricadas
- Alto Rendimento: Capaz de gerar uma grande quantidade de dados de sequência num curto espaço de tempo.
- Versatilidade: Aplicável a vários tipos de amostras de ácidos nucleicos (DNA, RNA, etc.).
- Flexibilidade: Permite pesquisa em diferentes níveis, como genómica, transcriptómica, epigenómica, etc.
- Precisão: Sequenciação de alto rendimento a tecnologia apresenta alta precisão e cobertura.
- Especialização Fiável: A experiência da equipa competente orienta-o em cada etapa do processamento de amostras.
- Tempo de Resposta Rápido: Proporciona o tempo de resposta mais rápido para o processamento de amostras, permitindo uma progressão mais rápida do controlo de qualidade à disseminação de dados e acelerando os prazos dos projetos.
Aplicação de Sequenciação de Bibliotecas Pré-Fabricadas
- Genómica Pesquisa
- Transcritosómica Pesquisa
- Pesquisa em Epigenética
- Pesquisa em Microbiomas
- Pesquisa em Oncologia
- Investigação em Doenças Raras
- Investigação Agrícola e de Reprodução
- … e mais
Fluxo de Trabalho de Sequenciamento de Biblioteca Pré-fabricada
O método de inspeção de qualidade dos tamanhos e concentrações da biblioteca é Qubit, Agilent bioanalyzer.

Especificações do Serviço
Requisitos de Amostra
| Plataforma | Concentração Mínima | Quantidade de Dados | Requisito de Volume |
|---|---|---|---|
| Novaseq-PE150 | 2 ng/μL | X<30G 30G≤X<100G 100G≤X≤400G 400G < X < 800G 800G |
≥15 μL ≥25 μL ≥50 μL ≥70 μL ≥100 μL (70 μL adicionais para mais uma pista) |
| Nova- PE250 | 2 ng/μL | X<30GM 30M≤X<100M 100M≤X<400M 400M |
≥15 μL ≥25 μL ≥50 μL ≥100 μL (70 μL adicionais para mais uma pista) |
| HiSeq-PE150 | 1 ng/μL | 1 Faixa | ≥10 μL |
| MiSeq-PE300 | 1 ng/μL | 1 Flowcell | ≥10 μL |
Nota: Os montantes de amostra são apresentados apenas para referência. Para informações detalhadas, por favor contacte-nos com os seus pedidos personalizados.
Estratégia de Sequenciamento
Sequenciação Illumina:
| Plataforma | Comprimento da Leitura (nt) | Unidade | Saída de Unidade (clusters brutos em milhões) |
|---|---|---|---|
| NovaSeq 6000 Clique |
PE50 | Faixa (SP) | 375-400 M |
| PE50 | Lane (S1) | 650-800M | |
| PE50 | Lane (S2) | 1.650-2.050 M | |
| PE100 | Faixa (SP) | 375-400 M | |
| PE100 | Faixa (S1) | 650-800M | |
| PE100 | Lane (S2) | 1.650-2.050 M | |
| PE100 | Faixa (S4) | 4.000-5.000M | |
| PE150 | Faixa (SP) | 375-400 M | |
| PE150 | Lane (S1) | 650-800M | |
| PE150 | Lane (S2) | 1.650-2.050 M | |
| PE150 | Faixa (S4) | 4.000-5.000M | |
| PE250 | Faixa (SP) | 375-400 M | |
| HiSeq 4000 | SE50 | Faixa | 300-400 M |
| PE75 | Faixa | 300-400 M | |
| PE150 | Faixa | 300-400 M | |
| MiSeq | PE150 | Flowcell (Nano) | 1 M |
| PE250 | Flowcell (Nano) | 1 M | |
| PE150 | Flowcell (Micro) | 4 M | |
| SE36 | Flowcell (V2) | 12-15 M | |
| PE25 | Flowcell (V2) | 12-15 M | |
| PE150 | Flowcell (V2) | 12-15 M | |
| PE250 | Flowcell (V2) | 12-15 M | |
| PE75 | Flowcell (V3i) | 22-25 M | |
| PE300 | Flowcell (V3) | 22-25 M |
| Plataforma | Tipo de Corrida |
|---|---|
| Pacbio Sequl II Célula SMRT 8M | Sequenciação HiFi |
| Sequenciação CLR |
Análise Bioinformática
- Controlo de Qualidade de Dados
- Pré-processamento de Dados
- Alinhamento
- Assembleia
- Deteção de Variantes
- Análise da Expressão Génica
- Anotação Funcional
- … e mais
Nota: Os dados de saída e os conteúdos de análise recomendados apresentados são apenas para referência. Para informações detalhadas, por favor contacte-nos com os seus pedidos personalizados.
Pipeline de Análise

Entregáveis
- Os dados de sequenciação originais
- Resultados experimentais
- Relatório de análise de dados
- Detalhes na Sequência da Biblioteca Pré-feita para a sua escrita (personalização)

1. Que tipos de amostras podem ser utilizadas para sequenciação de bibliotecas pré-fabricadas?
Para sequenciação de bibliotecas pré-fabricadas, são utilizados vários tipos de amostras, abrangendo:
- DNA genómico: Utilizado para sequenciação do genoma completo (WGS) ou sequenciação direcionada aplicações.
- RNA: Empregado na sequenciação do transcriptomaRNA-seq), abrangendo RNA total, mRNA e RNA pequeno.
- cDNA: Utilizado para sequenciar RNA transcrito reversamente em contextos específicos.
2. Como é avaliada a qualidade da biblioteca pré-fabricada?
A qualidade da biblioteca pré-fabricada é avaliada através de:
- Distribuição de Tamanhos: Analisando a distribuição do tamanho dos fragmentos utilizando um instrumento como o Agilent Bioanalyzer ou TapeStation.
- Medição de Concentração: Quantificação da concentração da biblioteca utilizando um fluorómetro Qubit ou PCR quantitativa (qPCR).
- Métricas de Controlo de Qualidade: Verificação de dímeros de adaptadores, contaminação e qualidade geral utilizando ferramentas como o FastQC para dados de sequenciação brutos.
3. A que se refere a uniformidade da produção da biblioteca?
Durante a sequenciação, o volume de dados de saída das bibliotecas no mesmo lane permanece uniforme em relação à quantidade de entrada da biblioteca. Por exemplo, ao misturar 5 bibliotecas e obter um total de 50G de dados, não deve haver um cenário em que uma biblioteca produza 30G de dados enquanto outra apenas 5G; cada biblioteca deve idealmente contribuir igualmente com 10G.
4. Pode a sequenciação de bibliotecas pré-fabricadas ser utilizada para análise de células individuais?
Certamente, a sequenciação de bibliotecas pré-fabricadas pode ser reaproveitada para análise de células únicas. Técnicas como a sequenciação de RNA de célula única (scRNA-seq) envolvem a isolação de células individuais, a transcrição reversa do RNA em cDNA e a criação de bibliotecas de sequenciação a partir do cDNA de célula única resultante. Esta metodologia permite a investigação da expressão génica a nível de célula única, desvendando insights sobre a heterogeneidade celular e a função.
Paisagem de mutações somáticas em 560 sequências do genoma completo de cancro da mama
Revista: Nature
Fator de impacto: 64.8001
Publicado: 2 de maio de 2016
Fundo
A teoria mutacional do cancro postula que alterações específicas na sequência de ADN, designadas por "mutações condutoras", conferem vantagens proliferativas às células, promovendo o surgimento de populações celulares malignas. Estas mutações podem resultar de diversos mecanismos, incluindo a exposição a mutagénicos, erros nos mecanismos de reparação do ADN e imprecisões durante a replicação do ADN. O progresso tecnológico, que vai desde a análise de cariótipo até à análise de alto rendimento Sequenciação de DNA, melhorou substancialmente a delimitação das mutações associadas ao câncer. No entanto, a atenção predominante tem sido direcionada para as regiões codificadoras de proteínas, deixando questões cruciais sem resposta sobre as mutações nas regiões não codificadoras e os processos mutagénicos intrínsecos subjacentes ao câncer de mama. Para colmatar essas lacunas de conhecimento, realizámos uma análise aprofundada de sequências de genoma completo a partir de 560 casos de cancro da mama, esforçando-se por uma elucidação abrangente das mutações somáticas neste contexto.
Métodos
- 560 cancros da mama
- Tecido normal
- Extração de ADN
- Extração total de RNA
- Bibliotecas genómicas de inserção curta de 500 pb
- bibliotecas transcriptómicas selecionadas por poli-A de 350 bp
- Sequenciação de alto rendimento
- Alinhamento
- Processamento de dados genómicos
- Identificação de novos genes do câncer da mama
- Análise de assinaturas mutacionais
- Assinaturas de rearranjo
- Perfis genómicos completos de pacientes individuais
Resultados
Foram sequenciados genomas completos de 560 cancros da mama e tecidos não neoplásicos correspondentes, detectando numerosas mutações somáticas. Ao combinar dados de várias fontes, novos genes cancerígenos foram identificados e mutações condutoras foram definidas. Rearranjos genómicos e alterações no número de cópias contribuíram ainda mais para a identificação de mutações condutoras, sendo TP53, PIK3CA e MYC alguns dos genes mais frequentemente mutados.
Fig 1. Coorte e catálogo de mutações somáticas em 560 cancros da mama.
Explorámos mutações somáticas não codificantes e identificámos mutações recorrentes no promotor do PLEKHS1 ligadas às assinaturas mutacionais 2 e 13. Mutações análogas foram observadas nos promotores de TBC1D12 e WDR74, sugerindo uma potencial hipermutabilidade. Adicionalmente, foram detetadas mutações em RNAs longos não codificantes MALAT1 e NEAT1, embora a sua importância como mutações condutoras permaneça incerta.
Fig 2. Análises não codificantes dos genomas do câncer de mama.
Conclusão
O progresso em direção a uma compreensão abrangente da genética do câncer da mama está em andamento, revelando múltiplas assinaturas mutacionais e implicando numerosos genes cancerígenos. No entanto, a raridade de genes de fusão de ação dominante e mutações condutoras não codificantes sugere complexidades adicionais. No entanto, muitas questões permanecem, incluindo a identificação de genes cancerígenos adicionais e os papéis de vírus ou micróbios. É necessária uma exploração mais aprofundada das sequências do genoma completo de pacientes com câncer da mama para elucidar completamente a paisagem mutacional somática da doença.
Referência:
- Nik-Zainal S, Davies H, Staaf J, et al. Paisagem de mutações somáticas em 560 sequências de genoma completo de cancro da mama. Natureza, 2016, 534(7605): 47-54.
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